Визуальная оценка жизнеспособности камчатского краба и краба-стригуна опилио в ходе транспортировки

На основе материала, собранного в Баренцевом море, представлены оценки физиологического состояния особей камчатского краба Paralithodes camtschaticus и краба-стригуна опилио Chionoecetes opilio по двигательным реакциям. Данные оценки могут быть использованы для определения жизнеспособности гидробионтов в полевых условиях, на борту судна, в ходе передержки на бассейновом комплексе и дальнейшей транспортировки в живом виде. Выявлено, что набор маркеров является видоспецифичным. Для камчатского краба в качестве маркеров были отобраны попытка перемещаться, двигательная активность ходильных конечностей, антеннул, конечностей ротового аппарата и скафогнатидов; для краба-стригуна опилио — передвижение, двигательная активность ходильных конечностей и конечностей ротового аппарата, сжимание клешней переопод при раздражении, тонус третьей пары максиллипед. Проведена верификация метода визуальной оценки жизнеспособности по биохимическим показателям гемолимфы — содержанию глюкозы, лактата, мочевой кислоты и общего белка.

1. Загорский И.А. 2011. Основные методы транспортировки камчатского краба Paralithodes camtschaticus на дальние расстояния // Рыбное хозяйство. № 5. C. 52–54.

2. Загорская Д.С., Загорский И.А., Ковачева Н.П. 2015. Биохимические параметры гемолимфы краба-стригуна опилио в ходе транспортировки // VIII Всерос. науч. конф. «Промысловые беспозвоночные». Сб. мат. Калининград: Издательство КГТУ. С. 61–63.

3. Загорская Д.С., Загорский И.А., Ковачева Н.П. 2017. Биохимические показатели как критерии оценки физиологического состояния камчатского краба Paralithodes camtschaticus (Decapoda, Lithodidae) в процессе транспортировки // Вопросы рыболовства. Т. 18. № 1. С. 85–92.

4. Иванов Б.Г., Карпинский М.Г. 2003. Смертность крабов в ловушках: краб-стригун в северной части Охотского моря // Вопросы рыболовства. Т. 4. № 4 (16). С. 590–607.

5. Иванов Б.Г., Соколов В.И. 2003. Смертность крабов в ловушках: камчатский краб у Западной Камчатки // Вопросы рыболовства. Т. 4. № 1 (13). С. 116–134.

6. Кобликов В.Н., Слизкин А.Г., Гаврилова Г.С., Явновой С.В., Павлючков В.А. 2003. Методические рекомендации по определению видового состава и возможности возвращения в среду обитания крабов и других морских биоресурсов, добытых с нарушениями Правил рыболовства или незаконным путем (дополненные и иллюстрированные) // Владивосток: ТИНРО-центр. 54 с.

7. Ковачева Н.П. 2008. Аквакультура ракообразных отряда Decapoda: камчатский краб Paralithodes camtschaticus и гигантская пресноводная креветка Macrobrachium rosenbergii. М.: Изд-во ВНИРО. 240 с.

8. Михайлов В.И., Бандурин К.В., Горничных А.В., Карасев А.Н. 2003. Промысловые беспозвоночные шельфа и материкового склона северной части Охотского моря. Магадан: МагаданНИРО. 284 с.

9. Моисеев С.И., Моисеева С.А., Лаптева A.M. 2012. Изменение показателей гемолимфы у крабов-стригунов вследствие стресса, вызываемого ловушечным промыслом // Вопросы рыболовства. Т. 13. № 1(49). С. 125–144.

10. Моисеев С.И., Моисеева С.А. 2014. Изменение показателей гемолимфы у синего краба Paralithodes platipus вследствие стресса, вызываемого ловушечным промыслом // Вопросы рыболовства. Т. 15. № 3. С. 189–208.

11. Моисеев С.И., Моисеева С.И. 2017. Проблемы содержания и транспортировки крабов в живом виде на краболовных судах // Труды ВНИРО. Т. 166. С. 22–31.

12. Родин В.Е., Слизкин А.Г., Мясоедов В.И., Барсуков В.Н., Мирошников В.В., Згуровский К.А., Канарский О.А., Федосеев В.Я. 1979. Руководство по изучению десятиногих ракообразных Decapoda дальневосточных морей. Владивосток: ТИНРО. 59 с.

13. Слизкин А.Г., Сафронов С.Г. 2000. Промысловые крабы прикамчатских вод. Петропавловск-Камчатский. 180 с.

14. Ткачук В.А. 2004. Клиническая биохимия. М.: ГЭОТАР-МЕД. С. 40–163.

15. Bakke S., Woll A.K. 2014. Evaluation of three handheld lactate meters for measuring hemolymph L-lactate in decapod crustaceans // J. of Shellfish Research. V. 33. № 1. P. 69–76.

16. Barrento S., Marques A., Vaz-Pires P., Nunes M.L. 2009. Live shipment of immersed crabs Cancer pagurus from England to Portugal and recovery in stocking tanks: Stress parameter characterization // ICES J. of Marine Science. V. 67. P. 435–443.

17. Bernasconi C.J, Uglow R.F., 2011. Purineolytic capacity response of Nephrops norvegicus to prolonge demersion: an ammonia detoxification process // Aquatic Biology. V. 11. P. 263–270.

18. Castro M., Araujo A., Monteiro P., Madeira A.M., Silvert W. 2003. The efficacy of releasing caught Nephrops as a management measure // Fish. Res. V. 65. P. 475–484.

19. Chang E. S., Chang S. A., Keller R., Reddy P. S., Snyder M.J., Spees J.L. 1999. Quantification of stress in lobsters: Crustacean hyperglycemic hormone, stress proteins, and gene expression // Integrative and Comparative Biology. V. 39(3). P. 487–495.

20. Fotedar S., Evans L. 2011. Health management during handling and live transport of crustaceans // J. of Invertebrate Pathology. V. 106. P. 143–152.

21. Moiseev S. I., Moiseeva S. A., Ryazanova T. V., Lapteva A.M. 2013. Effects of pot fishing on the physical condition of snow crabs (Chionoecetes opilio) and southern Tanner crabs (Chionoecetes bairdi) // Fish. Bull. V. 111. P. 233–251.

22. Paterson B.D., Spanoghe P.T. 1997. Stress indicators in marine decapod crustaceans, with particular reference to the grading of western rock lobsters (Panulirus cygnus) during commercial handling // New Zealand J. of Marine and Freshwater Res. V. 48. P. 829–834.

23. Paterson B.D., Spanoghe P.T., Davidson G.W., Hosking W., Nottingham S., Jussila J., Evans L.H. 2005. Predicting survival of western rock lobsters Panulirus cygnus using discriminant analysis of haemolymph parameters taken immediately following simulated handling treatments // New Zealand J. of Marine and Freshwater Res. № 39. P. 1129–1143.

24. Ridgway I. D., Taylor A. C., Atkinson R. J. A., Stentiford G.D., Chang E.S., Chang S.A., Neil D.M., 2006. Morbidity and mortality in Norway lobsters, Nephrops norvegicus: physiological, immunological and pathological effects of aerial exposure // J. of Experimental Marine Biology and Ecology. V. 328. P. 251–264.

25. Stoner A.W., Rose C.S., Munk J.E., Hammond C., Davis M. W. 2008. An assessment of discard mortality for two Alaskan crab species, Tanner crab (Chionoecetes bairdi) and snow crab (C. opilio) based on reflex impairment // Fish. Bull. V. 106. P. 337–347.

26. Stoner A.W. 2012. Assessing stress and predicting mortality in economically significant crustaceans // Reviews in Fisheries Science. V. 20. № 3. P. 111–135.

27. Spanoghe P.T., Bourne P.K. 1997. Relative influence of environmental factors and processing techniques on Panulirus cygnus morbidity and mortality during simulated live shipments // Marine and Freshwater Res. V. 48. P. 839–844.

28. Stevens B.G. 1990. Survival of king and Tanner crabs captured by commercial sole trawls // Fish. Bull. V. 88. P. 731–744.

29. Tallack S.M.L. 2007. Escape ring selectivity, bycatch and discard survivability in the New England fishery for deep-water red crab, Chaceon quinquedens // ICES J. of Marine Science. V. 64. P. 1579–1586.

30. Thomas L. 1998 Clinical Laborotory Diagnostics // Frankfurt: TH-Books. P. 200–350.

31. Warrenchuk, J.J., Shirley T.C. 2002. Effects of wind chill on the snow crab (Chionoecetes opilio) // Crabs in Cold Water Regions: Biology, Management and Economics. Fairbanks, Alaska: University of Alaska Sea Grant. P. 81–96.

32. Woll A.K., Larssen W.E., Fossen I. 2010. Physiological responses of brown crab (Cancer pagurus, Linnaeus 1758) to dry storage under conditions simulating vitality stressors // J. of Shellfish Res. V. 29. P. 479–487.