Preview

Труды ВНИРО

Расширенный поиск

Половые стероидные гормоны и стероидсекреторные клетки в гонадах у круглоротых и рыб

https://doi.org/10.36038/2307-3497-2023-193-56-81

Аннотация

 Цель работы: обобщение данных о содержании половых стероидных гормонов у круглоротых и рыб в связи  с различным состоянием гонад, а также о локализации и ультраструктурной организации стероидсекреторных клеток (СК).  

Используемый метод: обобщение данных литературы.  

Новизна: впервые в масштабе обзора литературы представлены данные о развитии СК в гонадах у молоди  рыб; показаны изменения в их локализации и функциональной активности.

 Результаты: большинство данных о стероидогенной функции гонад у рыб были получены в связи с исследованием дифференцировки (инверсии) пола и полового созревания (нереста). Однако даже в рамках этих  направлений есть противоречия, объясняемые, в первую очередь, использованием разных методик. В работе  рассмотрены вопросы синтеза половых стероидных гормонов и их молекулярного строения, содержание  в крови при различном состоянии гонад, а также локализация и ультраструктурная организация СК. Отмечено, что СК появляются в гонадах задолго до дифференцировки пола и могут присутствовать среди клеток  стромы, гранулёзы и теки. У видов со сменой пола инверсии гонад предшествует высокая активность СК.  У круглоротых и рыб — ювенильных протогинических гермафродитов в гонадах генетических самцов СК не  появляются в оболочках вокруг ооцитов периода превителлогенеза, что определяет у них дефицит гормонов  эстрогенов и, как следствие, инверсию пола. При индуцированной инверсии пола развитие стероидогенной  функции гонад идёт в направлении, противоположном её естественному развитию: у самцов появляются ооциты и стероидная активность из стромы гонад смещается в гранулёзу и теку; у самок, напротив, снижается  секреторная активность в фолликулярных оболочках и усиливается в строме гонад.  

Практическая значимость: результаты анализа дадут представления о природе половых стероидных гормонов, их динамике в крови и роли в реализации различных процессов гонадо- и гаметогенеза перед их  практическим применением в условиях рыбоводных хозяйств.

Об авторах

О. В. Зеленников
Санкт-Петербургский государственный университет
Россия

О. В. Зеленников

ФГБОУ ВО «СПбГУ», Университетская наб., 7/9, г. Санкт-Петербург, 199034



М. В. Мосягина
Санкт-Петербургский государственный университет
Россия

М. В. Мосягина

ФГБОУ ВО «СПбГУ», Университетская наб., 7/9, г. Санкт-Петербург, 199034



Список литературы

1. Айзенштадт Т.Б. 1984. Цитология оогенеза. М.: Наука. 247 с.

2. Арбузова Л.Л. 1995. Морфофункциональная характеристика клеток Лейдига семенников горбуши Oncorhynchus gorbuscha в период нерестовой миграции // Морфология. Т. 108. № 3. С. 72–75.

3. Ахундов М.М. 1991. Влияние экологических факторов на ранний гамето- и гонадогенез осетровых рыб. Автореф. дис. … канд. биол. наук. Баку. Ин-т физиологии. 22 с.

4. Ахундов М.М. 1997. Пластичность дифференцировки пола у осетровых рыб. Баку. Элм. 200с.

5. Ахундов М.М., Фёдоров К.Е. 1997. Влияние гипофизарных инъекций на развитие половых желёз у молоди стерляди // Труды БиНИИ. Вып. 44. С. 117–126.

6. Баранникова И.А. 1975. Гонадотропные и половые гормоны и их роль в регуляции функции воспроизводительной системы у пойкилотермных животных // Труды ВНИРО. Т. 61. С. 34–54.

7. Баранникова И.А. 1984. Гормональная регуляция репродуктивной функции у рыб с различной экологией // Биологические основы рыбоводства. М.: Наука. С. 186–202.

8. Баранникова И.А., Буковская О.С., Боев А.А., Дюбин В.П. 1991. Гормональная регуляция репродуктивной функции рыб (теоретические и практические аспекты) // Эндокринология репродукции. СПб.: Наука. С. 147–190.

9. Баранникова И.А., Дюбин В.П., Баюнова Л.В., Семенкова Т.Б. 2000. Стероиды в регуляции репродуктивной функции рыб // Российский физиологический журнал им. Сеченова. Т. 86. № 8. С. 968–978.

10. Баюнова Л.В. 2001. Роль стероидных гормонов в осуществлении жизненного цикла севрюги (Acipenser stelatus Pallas) в природе и при искусственном воспроизводстве. Автореф. дис. … канд. биол. наук. СПб: СПбГУ. 17 с.

11. Буковская О.С. 1986. Роль гонадотропина и половых гормонов в регуляции заключительных этапов репродуктивного цикла севрюги и осетра. Автореф. …дисс. канд. биол. наук. Л.: СПбГУ. 22 с.

12. Бурлаков А.Б., Емельянова Н.Г., Годович П.Л. 1995. Изменение гормонального статуса самок белого толстлобика Hypophthalmichthys molitix в перднерестовый период // Вопросы ихтиологии. Т. 35. № 1. С. 105–113.

13. Бурлаков А.Б. 1997. Половая специфичность гипофизарных гонадотропинов у икромечущих рыб. М.: Изд-во МГУ. 208 с.

14. Гарлов П.Е., Поленов А.Л. 1996. Функциональная цитоморфология преоптико-гипофизарной нейросекреторной системы рыб // Цитология. Т. 38. № 3. С. 275–299.

15. Груслова А.Б. 2004. Стероидные гормоны в осуществлении репродуктивной функции русского осетра (Acipenser gueldenstaedtii Br.) в природе и в искусственных условиях. Автореф. … дисс. канд. биол. наук. СПб.: СПбГУ. 16 с.

16. Дюбин В.П. 1979. Изучение интерреналовой железы осетровых (сем. Acipenseridae) в связи с регуляцией уровня ионов в крови. Автореф. … дисс. канд. биол. наук. Л.: ЛГУ. 20 с.

17. Дюбин В.П. 1986. Гистохимическое исследование стероидогенной ткани гонад русского осетра // Цитология. Т. 26. № 4. С. 448–451.

18. Журавлева Т.Б., Прочуханов Р.А., Иванова Г.В., Ковальский Г.Б., Ростовцева-Байдаченко Т.И. 1976. Функциональная морфология нейроэндокринной системы. Л.: Наука. 198 с.

19. Заварзин А.А., Харазова А.Д. 1982. Основы общей цитологии. Л.: Изд-во ЛГУ. 240 с.

20. Заварзин А.А., Харазова А.Д., Молитвин М.Н. 1992. Биология клетки: общая цитология. СПб: Изд-во СПбГУ. 320 с.

21. Заки М.И., Эль-Гарабави М.М., Камиль С.С. 1994. Сезонные изменения гонадотропного и половых стероидных гормонов в сыворотке крови лобана Mugil cephalus в лагуне Эль-Бардавиль Средиземного моря // Вопросы ихтиологии. Т. 34. Вып. 6. С. 827–830.

22. Зеленников О.В. 2021. Влияние процессов раннего оогенеза на развитие воспроизводительной системы у рыб. Автореф. дис. … докт. биол. наук. М.: ВНИРО. 43 с.

23. Лагунова В.С. 1977. Щитовидная железа и нейрогипофиз молоди севрюги и осетра в период её миграции из реки в море // Физиология и биохимия онтогенеза. Л.: Наука. С. 109–113.

24. Лейбсон Л.Г. 1987. Происхождение и эволюция эндокринной системы // Эволюционная физиология. Л.: Наука. ч. 2. С. 3–52.

25. Межнин Ф.И. 1972. Интерреналовая и хромафинная ткань пресноводных рыб // Вопросы ихтиологии. Т. 12. Вып. 4. С. 733–747.

26. Мосягина М.В., Кузнецова И.В., Зеленников О.В., Гарлов П.Е. 2003. Морфо-функциональный анализ состояния сте- роидсекреторных клеток гонад молоди горбуши (Oncorhynhus gorbuscha (Walbaum)) в норме и при воздействии эстрадиолом // Цитология. Т. 45. № 5. С. 450–455.

27. Мосягина М.В., Зеленников О.В. 2006. О роли стероидсекреторных клеток в регуляции развития гонад у молоди тихоокеанских лососей // Вопросы ихтиологии. Т. 46. № 2. С. 272–277.

28. Мосягина М.В., Зеленников О.В. 2012. Экспериментальный анализ влияния половых стероидных гормонов на состояние стероидсекреторных клеток у молоди лососевых рыб // Вестник СПбГУ. Сер. 3. Вып. 4. С. 3–19.

29. Мосягина М.В., Зеленников О.В. 2015. Развитие стероидсекреторных клеток у молоди горбуши и миноги в период дифференцировки пола // Вестник СПбГУ. Сер. 3. Вып. 3. С. 36–45.

30. Мосягина М.В., Зеленников О.В. 2016. Состояние стероидсекреторных клеток и концентрация половых стероидных гормонов в плазме крови сибирского осетра Acipenser baerii и стерляди A. rutenus (Acipenseridae) в период дифференцировки пола // Вопросы ихтиологии. T. 56. № 1. С. 95–101.

31. Мосягина М.В., Зеленников О.В. 2019. Особенности ультраструктурной организации стероидсекреторных клеток в гонадах у молоди круглоротых и рыб // Труды ЗИН. Т. 323. № 4. С. 442–450.

32. Поленов А.Л. 1968. Гипоталамическая нейросекреция. Л.: Наука. 159 с.

33. Поленов А.Л. 1975. Гипоталамический контроль процессов размножения у рыб // Труды ВНИРО. Т. 61. С. 54–68.

34. Поленов А.Л., Гарлов П.Е. 1989. О миоидно-секреторных (стероидогенных) клетках соединительнотканной оболочки (теки) фолликулов яичника половозрелых осетровых рыб // Цитология. Т. 31. № 2. С. 161–168.

35. Поленов А.Л., Кулаковский Э.Е. 1993. Происхождение и эволюция нейроэндокринных клеток и нейрогормональной регуляции у Metazoa // Нейроэндокринология. СПб. Ч. 1. кн. 1. С. 13–31.

36. Рендаков Н.Л. 2018. Некоторые аспекты стероидной регуляции у костистых рыб // Труды Карельского научного центра РАН. № 6. С. 3–21. DOI: 10.17076/eb777.

37. Розен В.Б. 1981. Рецепция гормонов клеткой и принцип саморегуляции в инициации гормонального эффекта // Механизмы гормональных регуляций и роль обратных связей в явлениях развития и гомеостаза. М.: Наука. 332 с.

38. Саенко И.И. 1993. Каудальная нейросекреторная система рыб // Нейроэндокринология. Ч. 1. кн. 1. С. 123–139.

39. Семенов В.В. 1989. Возможное происхождение, структура и локализация стероидсекретирующих клеток в яичнике молоди осетровых рыб // Цитология. Т. 31. № 1. С. 34–41.

40. Семенов В.В. 1995. Пополнение фонда половых и секреторных клеток в гонадах половозрелых самок русского осетра Acipenser gueldenstaedti // Вопросы ихтиологии. Т. 35. № 4. С. 487–495.

41. Семенов В.В. 1996. Развитие половых и секреторных клеток яичника в раннем онтогенезе осетровых рыб // Цитология. Т. 38. № 4/5. С. 445–455.

42. Семенов В.В., Фёдоров К.Е., Ахундов М.М. 1997. Ультраструктурный анализ закладки и половой дифференцировки гонад у стерляди и ленского осетра // Труды БиНИИ. Вып. 44. С. 7–17.

43. Сергеев Т.В. 1984. Стероидные гормоны. М.: Наука. 240 с.

44. Теппермен Дж., Теппермен Х. 1989. Физиология обмена веществ и эндокринной системы. М.: Мир. 653 с.

45. Уголев А.М. 1985. Эволюция пищеварения и принципы эволюции функций. Л.: Наука. 544 с.

46. Фаллер Дж.М., Шилдс Д. 2004. Моллекулярная биология клетки. М.: Бином-пресс. 272 с.

47. Фёдоров К.Е. 1997. Гормональные аспекты регуляции раннего гамето- и гонадогенеза рыб // Труды БиНИИ. Вып. 44. С. 100–117.

48. Фёдоров К.Е., Зубова С.Э., Семенов В.В., Бурлаков А.Б. 1990. Стероидсекреторные клетки в гонадах молоди стерляди Acipenser ruthenus L. в период дифференцировки пола // Вопросы ихтиологии. Т. 30. Вып. 1. С. 65–75.

49. Христофоров О.Л., ЛеГак Ф., Мурза И.Г. 1994. Гормональный статус анадромных мигрантов атлантического лосося летней и осенней биологических групп // Мат. V Всерос. совещ. «Систематика, биология и биотехника разведения лососевых рыб». СПб. Изд-во ГосНИОРХ. С. 206–208.

50. Христофоров О.Л., Мурза И.Г. 1998. Репродуктивная функция и её контроль у атлантического лосося // Атлантический лосось. СПб.: Наука. С. 75–127.

51. Чернышева М.П. 1995. Гормоны животных. Введение в физиологическую эндокринологию: учебное пособие. СПб.: Изд-во Глаголь. 296 с.

52. Яковлева И.В. 2000. Нейроэндокринологические аспекты раннего онтогенеза круглоротых и рыб. СПб.: ООО Издво Петрополис. 132 с.

53. Afonso L.O.B., Leboute E.M. 2003. Sex reversal in Nile tilapia: Is it possible to produce all male stocks through immersion in androgens? // World Aquaculture Inc. Aquacult. Eur. V. 34. № 3. P. 16–19.

54. Andersen O., Skibeli V., Haug E., Gautvik K.M. 1991. Serum prolactin and sex steroids in Atlantic salmon (Salmo salar) during sexual maturation // Aquaculture. V. 95. P. 169–178.

55. Ashby K. R. 1957. The effect of steroid hormones on the brown trout (Salmo trutta) during the period of gonadal differentiation // J. of Embryology and Experimental Morphology. V. 3. P. 225–249.

56. Attardi G., Schatz G. 1988. Biogenesis of mitochondria // Annual Review of Cell Biology. V. 4. P. 289–333.

57. Bahr J., Kao L., Nalbandov A.V. 1974. Role of catecholamines and nerves in ovulation // Biology of Reproduction. V. 10. P. 273–290.

58. Bara G. 1969. Histochemical demonstration of 3b-, 11band 17b-hydroxy-steroid dehydrogenases in the testis of Fundulus heteroclitus // General Comparative Endocrinology. V. 13. P. 189–200.

59. Baroiller J.-F., Guiguen Y., Fostier A. 1999. Endocrine and environmental aspects of sex differentiation in fish // Cellular and Molecular Life Sciences. V. 55. P. 910–931.

60. Belsare D.K. 1973. On the evolution of testicular endocrine tissue in some teleosts // Zeitschrift fur MikroskopischAnatomische Forschung. V. 87. P. 610–618.

61. Berchtold J.P. 1977. Ultracytochemical demonstration and probable localization of 3b-hydroxysteroid degydrohenase activity with a ferrycyani technique // Histochemistry. V. 50. P. 175–190

62. Berlind A. 1973. Caudal neurosecretory system: a physiologist view // American Zoologist. V. 13. P. 759–770.

63. Bhandari R.K., Higa M., Komuro H., Nakamura S., Nakamura M. 2003. Aromatase inhibitor induces complete sex change in protogynous honeycomb grouper (Epinephelus merra) // Abstr. 7th Intern. Symp. on Reproductive Physiology of Fish. Mie. Japan. P. 40.

64. Bhattacharya S., Halder S., Manna P.R. 1994. Current status of endocrine aspects of fish reproduction // Proceedings of the Indian National Science Academy. V. 60. P. 33–44.

65. Borg B. 1994. Androgens in teleost fishes. Mini review // Comparative Biochemistry and Physiology. V. 109. № 3. P. 219–245.

66. Bouma J., Cloud J.G., Nagler J.J. 2003. Estradiol-17b causes proliferation of interstitial cells in the pre-spermatogenic rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) testis // Abstr. 7th Intern. Symp. on Reproductive Physiology of Fish. Mie. Japan. P. 52.

67. Breton B., Fostier A., Zohar Y., Le Bail P. Y., Billard R. 1983. Gonadotropine glycoproteique et estradiol-17b pendant le cycle reproducteur chez la truite fario (Salmo trutta) femelle // General and Comparative Endocrinology. V. 49. P. 220–231.

68. Busson-Mabillot S. 1967. Structure ovarienne de la lamproie adulte (Lampetra planeri Bloch). II. Les enveloppes de l’ovocyte: cellules folliculaires et stroma ovarienne // J. of Microscopie. V. 6. P. 807–838.

69. Callard G.V., Petro Z., Ryan K.J. 1981. Biochemical evidence for aromatization of androgen to estrogen in the pituitary // General and Comparative Endocrinology. V. 44. P. 359–364.

70. Campbell C.M., Walsh J.M., Idler D.R. 1976. Steroids in the plasma of the winter flounder Pseudopleuronectes americanus W. A seasonal study and investigation of steroid involvement in oocyte maturation // General and Comparative Endocrinology. V. 29. P. 14–20.

71. Campbell C. M., Fostier A., Jalabert B., Truscott B. 1980. Identification and quantification of steroids in the serum of spermiating or ovulating rainbow trout // J. of Endocrinology. V. 85. P. 371–378.

72. Cardwell J.R., Liley N.R. 1991. Hormonal control of sex and color change in the stoplight parrotfish, Sparisoma virida // General and Comparative Endocrinology. V. 81. № 1. P. 7–20.

73. Chang C.F., Yueh W.S. 1990. Annual cycle of gonadal histology and steroid profiles in the juvenile males and adult females of the protandrous black porgy Acanthopagrus schlegeli // Aquaculture. V. 91. P. 179–196.

74. Chang C. F., Hung C. Y., Chiang M. C., Lan S. C. 1999. The concentrations of plasma sex steroids and gonadal aromatase during controlled sex differentiation in grey mullet, Mugil cephalus // Aquaculture. V. 173. № 1–4. P. 37–45.

75. Chieffi G., Pierantoni R. 1987. Regulation of ovarian steroidogenesis // Hormones and reproduction in fishes, amphibians, and reptiles. Plenum Press. New York and London. P. 117–144.

76. Christensen A.K., Gillim S.W. 1969. The correlation of fine structure and function in steroid-secreting cells, with emphasis on those of the gonads // The gonads. / McKerns K. W. (ed.). Noth-Holland Publ. Co., Amsterdam. P. 415–488.

77. Cochran R.C., Grier H.J. 1991. Regulation of sexual succession in the protogynous black sea bass Centropristis striatus Osteichthyes Serranidae // General and Comparative Endocrinology. V. 82. P. 69–77.

78. Colombo L., Colombo Belvedere P. 1976. Steroid biosynthesis by the ovary of the European eel, Anguilla anguilla L. at the silver stage // General and Comparative Endocrinology. V. 28. P. 371–385.

79. Colombo L., Colombo Belvedere P., Andrea M. 1979. Biochemical and functional aspects of gonadal biosynthesis of steroid hormones in teleost fishes // Hormonal Steroids Fish: Proc. Satellite Symp. New Delhi. P. 443–451.

80. de Vlaming V.L. 1974. Environmental and endocrine control of teleost reproduction / In.: Control of sex in fishes. Ed. C.B. Schreck. Extension Division. Virginia (USA). P. 13–83.

81. de Vlaming V.L., Shing J., Paquette G., Vuchs R. 1977. In vivo and in vitro effects of oestradiol-17b on lipid metabolism in Notemigonus crysoleucas // J. of Fish Biology. V. 10. № 3. P. 273–285.

82. Devlin R. H., Nagahama Y. 2002. Sex determination and sex differentiation in fish: an overview of genetic, physiological, and environmental influences // Aquaculture. V. 208. P. 191–364.

83. Dombrowicz D., Sente B., Reiter E., Closset J., Hennen G. 1996. Pituitary control of proliferation and differentiation of Leydig cells and their putative precursors in immature hypophysectomized rat testis // J. of Andrology. V. 17. № 6. P. 639–650.

84. Donaldson E.M. 1973. Reproductive endocrinology of fishes // American Zoologist. V. 13. № 3. Р. 909–931.

85. Emmersen J., Korsgaard B., Petersen I. 1979. Dose response kinetics of serum vitellogenin, liver DNA, RNA, protein and lipid after induction by estradiol-17b in male flounders (Platichthys flesus L.) // Comparative Biochemistry and Physiology. B. V. 63. P. 1–6.

86. Feist G., Schreck C.B., Fitzpatrick M.S., Redding J.M. 1990. Sex steroid profiles of coho salmon (Oncorhynchus kisutch) during early development and sexual differentiation // General and Comparative Endocrinology. V. 80. P. 299–313.

87. Follenius E., Porte A. 1960. Cytologie fine des cellules interstitielles du testicule de poisson Leistes reticulatus R. // Experientia. V. 16. P. 190–192.

88. Fostier A., Breton B. 1975. Binding of steroids by plasma of a teleost: The rainbow trout Salmo gairdneri // J. of Steroid Biochemistry. V. 6. P. 345–351.

89. Fostier A., Weil C., Terqui M., Breton B., Jalabert B. 1978. Plasma estradiol-17b and gonadotropin during ovulation in rainbow trout Salmo gairdneri // Ann. Biol. Anim., Biochem., Biophys. V. 18. P. 929–936.

90. Fostier A., Jalabert B. 1982. Physiological basis of practical means to induce ovulation in fish // Proc. Int. Symp. Reprod. Physiol. Fish. Wageningen. Netherlands. P. 164– 173.

91. Fostier A., Jalabert B., Billard R., Breton B. 1983. The gonadal steroids // Fish physiology. V. IXA. P. 277–372.

92. Foucher J.L., de Niu P., Mourot B., Vaillant C., Le Gac F. 1991. In vivo and in vitro studies on sex steroid binding protein sbp regulation in rainbow trout Oncorhynchus mykiss influenc of sex steroid hormones and of factors linked to growth and metabolism // J. of Steroid Biochemistry. V. 39. P. 975–986.

93. Foucher J. L., Le Bail P. Y., Le Gac F. 1992. Influence of hypophysectomy castration fasting and spermiation on Spb concentration in male rainbow trout Oncorhynchus mykiss // General and Comparative Endocrinology. V. 84. P. 101–110.

94. Freeman H.C., Idler D.R. 1966. Transcortin binding of cortisol in Atlantic salmon (Salmo salar) plasma // General and Comparative Endocrinology. V. 7. № 1. P. 37–43.

95. Freeman H.C., Idler D.R. 1971. Binding affinities of blood proteins for sex hormones and corticosteroids in fish // Steroids. V. 17. № 2. P. 233–250.

96. Freeman H.C., Sangalang G.B., Burn G., Menemy M. Mc. 1983. The blood sex hormone levels in sexually mature male Atlantic salmon (Salmo salar) in the Westfield River (pH 4,7) and the Medway River (pH 5,6), Nova Scotia // The Science of the Total Environment. V. 32. P. 87–91.

97. Godwin J. 1994. Behavioural aspects of protandrous sex changein the anemonefish, Amphiprion melanopus, and endocrine correlates // Animal Behaviour. V. 48. P. 551–567.

98. Gopesh A., Srivastava P. 2003. Caudal neurosecretory system in an exotic species of catfish Clarias gariepinus // National Academy of Sciences, India. Science Letters. V. 26. № 1–2. P. 47–48.

99. Grier H. J. 1981. Cellular organisation of the testis and spermatogenesis in fisnes // American Zoologist. V. 21. P. 345–357.

100. Guiguen Y., Jalabert B., Thouard E., Fostier A. 1993. Changes in plasma and gonadal steroid hormones in relation to the reproductive cycle and the sex inversion process in the protandrous seabass Lates calcarifer // General and Comparative Endocrinology. V. 92. P. 327–338.

101. Guiguen Y., Jalabert B., Benett A., Fostier A. 1995. Gonadal in vitro androstenedione metabolism and changes in some plasma and gonadal steroid hormones during sex inversion of the protandrous seabass, Lates calcarifer // General and Comparative Endocrinology. V. 100. P. 106–118.

102. Guiguen Y., Baroiller J.F., Ricordel M.J., Iseki K., McMeel O.M., Martin S.A.M., Fostier A. 1999. Involvement of estrogens in the process of sex differentiation in two fish species: the rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) and a Tilapia (Oreochromis niloticus) // Molecular Reproduction and Development. V. 54. P. 154–162.

103. Guraya S. S. 1976 a. Recent advances in the morphology, histochemistry, and biochemistry of steroid-synthesizing cellular sites in the non-mammalian vertebrate ovary // International Review of Cytology. V. 44. P. 365–409.

104. Guraya S. S. 1976 b. Recent advances in the morphology, histochemistry, and biochemistry of steroid-synthesizing cellular sites in the testes of nonmammalian vertebrates // International Review of Cytology. V. 47. P. 99–136.

105. Guraya S.S. 1994. Gonadal development and production of gametes in fish // Proceedings of the Indian Academy of Sciences. Section B.V. 60. P. 15–32.

106. Hardisty M.W., Barnes K. 1968. Steroid 3b-ol-dehydrogenase activity in the cyclostome gland // Nature. V. 218. P. 880.

107. Haugen T., Andersson E., Norberg B., Taranger G.L. 2011. The production of hermaphrodites of Atlantic cod (Gadus morhua) by masculinization with orally administered 17α-metgyltestosterone, and subsequent production of all-female populations // Aquaculture. V. 311. № 1–4. P. 148–154.

108. Higa M., Ogasawara K., Sakaguchi A., Nagahama Y., Nakamura M. 2003. Role of steroid hormones in sex change of protogynous wrasse // Abstr. 7th Intern. Symp. on Reproductive Physiology of Fish. Mie. Japan. P. 42.

109. Higashino T., Miura T., Miura C., Yamauchi K. 2003. Effects of several sex steroid hormones on early oogenesis in japanese huchen (Hucho perryi) // Abstr. 7th Intern. Symp. on Reproductive Physiology of Fish. Mie. Japan. P. 86.

110. Hishida T.O. 1964. Reversal of sex-differentiation in genetic males of the medaka (Oryzias latipes) by injecting estrone-16-C14 and diethylstilbestrol-(monoethyl-1-C14) into the egg // Embryologia. V. 8. P. 234–246.

111. Hishida T.O. 1969. Hydroxysteroid dehydrogenase in larval gonad of the medaka, Oryzias latipes // Zool Mag. Tokyo. V. 78. P. 25.

112. Hoar W.S. 1969. Reproduction // Fish physiology. V. 3. P. 1–72.

113. Hoar W. S., Nagahama Y. 1978. The cellular sources of sex steroids in teleost gonads // Ann. biol. anim. biochim. biophys. V. 18. P. 893–898.

114. Hori S. H., Kodama T., Tanamasmi K. 1978. Induction of vitellogenin synthesis in goldfish by massive doses of androgens // General and Comparative Endocrinology. V. 37. P. 306–320.

115. Idler D.R. 1969. Steroidogenesis in fish // Fish research. N.-Y.: Acad. Press. P. 121–133.

116. Idler D.R., Truscott B. 1972. Corticosterids in fish. In: Steroids in Nonmammalian Vertebrates. Ac. Pr., New-York. P. 127–252.

117. Iwasaki Y. 1973. Histochemical detection of D5–3bhydroxysteroid dehydrogenase in the ovary of medaka, Oryzias latipes, during annual reproductive cycle // Bulletin of Fisheries Sciences, Hokkaido University. V. 23. P. 177–184.

118. Jalabert B., Goetz F.W., Breton B., Fostier A., Donaldson E. 1978. Precocious induction of oocyte maturation and ovulation in coho salmon, Oncorhynchus kisutch // J. of Fisheries Research Board Canada. V. 35. P. 1423–1429.

119. Jalabert B., Baroiller J.-F., Breton B., Fostier A., Le Gas F., Guiguen Y., Monod G. 2000. Main neuro-endocrine, endocrine and paracrine regulation of fish reproduction, and vulnerability to xenobiotics // Ecotoxicology. V. 9. № 1–2. P. 25–40.

120. Johnson A.K., Thomas P., Wilson Jr.R.R. 1998. Seasonal cycles of gonadal development and plasma sex steroid levels in Epinephelus morio, a protogynous grouper in the eastern Gulf of Mexico // J. of Fish Biology. V. 52. P. 502–518.

121. Kagawa H., Takano K. 1979. Ultrastructure and histochemistry of granulosa cells of pre- and post-ovulatory follicles in the ovary of the medaka, Oryzias latipes // Bulletin of Fisheries Sciences, Hokkaido University. V. 30. P. 191–204.

122. Kagawa H., Takano K., Nagahama Y. 1981. Correlation of plasma estradiol-17b and progesterone levels with ultrastructure and histochemistry of ovarian follicles in the whitespotted char, Salvelinus leucomaenis // Cell and Tissue Research. V. 218. P. 315–329.

123. Kagawa H., Young G., Adachi S., Nagahama Y. 1982. Estradiol-17b production in amago salmon Oncorhynchus rhodurus ovarian follicles: role of thecal and granulosa cells // General and Comparative Endocrinology. V. 44. P. 440–448.

124. Kanamori A., Nagahama Y., Egami N. 1985. Development of the tissue architecture in the gonads of the medaka Oryzias latipes // Zoological Science. V. 2. P. 695–706.

125. Kavaliers M. 1980. The pineal organ and circadian rhythms of fishes / Environmental physiology of fishes. New-York. London. P. 631–645.

126. Kawahara T., Yamashita I. 2000. Estrogen-independent ovary formation in the medaka fish, Oryzias latipes // Zoological Science. V. 17, № 1. P. 65–68.

127. Kime D.E. 1978. The hepatic catabolism of cortisol in teleost fish — adrenal origin of 11-oxotestosterone precursors // General and Comparative Endocrinology. V. 35. P. 327–328.

128. Kitano T., Takamune K., Nagahama Y., Abe S-I. 2000. Aromatase inhibitor and 17alpha-methyltestosterone cause sexreversal from genetical females to phenotypic males and suppression of P450 aromatase gene expression in Japanese flounder (Paralychthys olivaceus) // Molecular Reproduction and Development. V. 56. P. 1–5.

129. Kobayashi T., Chang X.-T., Nakamura M., Kajiura H., Nagahama Y. 1996. Fish 3b-hydroxysteroid dehydrogenase D5- D4isomerase: Antibody production and their use for the immunohistochemical detection of fish steroidogenic tissues // Zoological Science. V. 13. P. 909–914.

130. Kroon F.J., Liley N.R. 2000. The role of steroid hormones in protogynous sex change in the blackeye goby, Coryphopterus nicholsi (Teleostei: Gobididae) // General and Comparative Endocrinology. V. 118. P. 273–283.

131. Kwon H.C., Choi Y.U., Kim S.O., Kwon J.Y. 2003. Involvement of androgens and growth hormone in the synthesis of vitellogenin in Japanese eel (Anguilla japonica) // Abstr.t 7th Intern. Symp. on Reproductive Physiology of Fish. Mie. Japan. P. 89.

132. Lahnsteiner F., Patzner R.A., Weismann T. 1993. The spermatic ducts of salmonid fishes (Salmonidae, Teleostei). Morphology, histochemistry and composition of the secretion // J. of Fish Biology. V. 18. P. 79–93.

133. Laidley C. W., Thomas P. 1997. Changes in plasma sex steroid binding protein levels associated with ovarian recrudescence in the spotted seatrout (Cynoscion nebulosus) // Biology of Reproduction. V. 56. P. 931–937.

134. Lambert J.G.D., Oordt P.G.W.J. 1974. Ovarian hormones in teleosts // Fortshritte der Zoologie. V. 22. P. 340–349.

135. Lambert J.G.D., Pot M.G.E. 1975. Steroidogenesis in ovarian tissue of a viviparous teleost, the Guppy Poecilia reticulata // Comparative Biochemistry Physiology. V. 50B. P. 585– 589.

136. Lambert J.G.D., Bosman G.I.C.G.M., Van den Hurk R., Oordt P.G.W.J. 1978. Annual cycle of plasma oestradiol-17b in the female trout Salmo gairdneri // Ann. Biol. anim. Bioch. Biophys. V. 18. № 4. P. 923–927.

137. Lambert J.G.D., Oordt P.G.W.J. 1982. Catecholestrogens in the brain of the female trout Salmo gairdneri // General and Comparative Endocrinology. V. 46. P. 401.

138. Lang I. 1981. Electron microscopic and histochemical study of the postovulatory follicles of Perca fluviatilis L. (Teleostei) // General and Comparative Endocrinology. V. 45. № 2. P. 219–233.

139. Larsen L.O. 1965. Effects of hypophysectomy in the cyclostome, Lampetra fluviatilis (L.) Gray // General and Comparative Endocrinology. V. 5. P. 16–30.

140. Lazier C.B., Loergan K., Mommsen T.P. 1985. Hepatic estrogen receptors and plasma estrogen-binding activity in the Atlantic salmon // General and Comparative Endocrinology. V. 57. P. 234–245.

141. Lembke P.J., Schulz R., Blum V. 1989. Liver and head kidney androgens in male rainbow trout // General and Comparative Endocrinology. V. 74. № 2. P. 297–298.

142. Le Menn F., Rochefort H., Garcia M. 1980. Effect of androgen mediated by the estrogen receptor of fish liver: Vitellogenin accumulation // Steroids. V. 35. P. 315–328.

143. Lofts B., Bern H. B. 1972. The functional morphology of steroidogenic tissue // Steroids in Nonmammalian Vertebrates. / Idler D.R. (ed.) Academic Press. New York. P. 37–125.

144. Lofts B. 1987. Testicular function // Hormones and Reproduction in Fishes, Amphibians and Reptiles / D.O. Norris, R. E. Jones, Eds. Plenum Press. New York. P. 283–326.

145. Loir M., Cinne M., Chantal C. 1989. Leydig cells in Myleus ternetzi testes // Aquatic Living Resources. V. 2. № 2. P. 57–61.

146. Lokman P.M., George K. A.N., Divers S. L., Algie M., Young G. 2007. 11-Ketotestosterone and IGF-1 increase the size of previtellogenic oocytes from shortfinned eel, Anguilla australis, in vitro // Reproduction. V. 133. № 5. P. 955–967.

147. Luchenbach J. A., Godwin J. Daniels H. V. Borski R. J. 2003. Gonadal differentiation and effects of temperature on sex determination in southern flounder (Paralichthys lethotigma) // Aquaculture. V. 216. № 1–4. C. 315–327.

148. Luo L. D., Chen H. L., Zirkin B. R. 1996. Are Leydig cell steroidogenic enzymes differentially regulated with aging // J. of Andrology. V. 17. № 5. P. 509–515.

149. Marshall A.J., Lofts B. 1956. The leydig-cell homologue in certain teleost fishes // Nature. V. 177. P. 704–705.

150. Martin B. 1980. Steroid-protein interactions in nonmammalian vertebrates: distribution, origin, regulation, and physiological significance of plasma steroid binding proteins // Steroids and their Mechanism of Action in Nonmammalian Vertebrates / Delrio G., Brachet J. eds. Raven Press, New York. P. 63–83.

151. Maruska K.P., Koznan W.J., Mensinger A. F. 2009. Individual, temporal, and population-level variations in circulating 11-ketotestosterone and 17β-estradiol concentrations in the oyster toadfish Opsanus tau // Comparative Biochemistry and Physiology A. 1009. V. 152. № 4. P. 569–578.

152. Matsubara H., Lokman P. M., Senaha A., Kazeto Y., Ijiri S., Kambegawa A., Hirai T., Young G., Adachi S., Yamauchi K. 2003. Synthesis and possible function of 11-ketotestosterone during oogenesis in eel (Anguilla spp.) // Abst. 7th Intern. Symp. on Reproductive Physiology of Fish. Mie. Japan. P. 90.

153. Mayer I., Borg B., Berglund I., Lambert J.G.D. 1991. Effects of castration and androgen treatment on aromatase activity in the brain of mature male Atlantic salmon (Salmo salar L.) parr // General and Comparative Endocrinology. V. 82. P. 86–92.

154. Meduri G., Charnaux N., Driancourt M.A., Combettes L., Granet P., Vannier B., Loosfelt H., Milgrom E. 2002. Follicle- stimulating hormone receptors in oocytes? // J. of Clinical Endocrinology and Metabolism. V. 87. № 5. P. 2266–2276.

155. Mendishandagama S.M.L.C. 1997. Luteinizing hormone on leydig cell structure and function // Histology and Histopathology. V. 12. № 3. P. 869–882.

156. Miura T., Yamauchi K., Takahashi H., Nagahama Y. 1992. The role of hormones in the acquisition of sperm motility in salmonid fish // J. of Experimental Zoology. V. 261. № 3. P. 359–363.

157. Miura T. 2003. Molecular control mechanisms of fish spermatogenesis // Abst. 7th Intern. Symp. on Reproductive Physiology of Fish. Mie. Japan. P. 51.

158. Miyano M., Ito Y., Fujihira S., Matsuo T., Ueno H., Mori H. 1997. Restoration of Leydig cells after repeated administration of ethane dimethanesulfonate in adult rats // Pathology International. V. 47. № 7. P. 478–488.

159. Morita S., Matsuyama M., Kashiwagi M. 1997. Seasonal changes of gonadal histology and serum steroid hormone levels in the bambooleaf wrasse Preudolabrus japonicus // Bulletin of Japanese of Society Science Fisheries. Nippon suissan Gakkaishi. V. 63. P. 694–700.

160. Morrey C.E., Nakamura M., Kobayashi T., Gau E.G., Nagahama Y. 1998. P450SCC-like immunoreactivity throughout gonadal restructure in the protogunous hermaphrodite Thalassoma duperrey // International J. of Developmental Biology. V. 42. P. 811–816.

161. Mugiya Y., Ichii T. 1981. Effects of estradiol-17b on brachial and intestinal calcium uptake in the rainbow trout Salmo gairdneri // Comparative Biochemistry Physiology. A. V. 70. P. 97–101.

162. Munor E., Fogal T., Dominguer S., Scardapane L., Gazman J., Piezzi R.S. 1997. Seasonal changes of the Leydig cells of Vicacha (Lagostomus maximus maximus) — a light and electron microscopy study // Tissue Cell. V. 29. № 1. P. 119–128.

163. Nagahama Y., Chan K., Hoar W.S. 1976. Histochemistry and ultrastructure of pre- and postovulatory follicles in the ovary of the goldfish Carassius auratus // Canadian of J. Zoology. V. 54. P. 1128–1139.

164. Nagahama Y., Clarke W.C., Hoar W.S. 1978. Ultrastructure of putative steroid-producing cells in the gonads of coho (Oncorhynchus kisutch) and pink salmon (Oncorhynchus gorbuscha) // Canadian of J. Zoology. V. 56. P. 2508–2519.

165. Nagahama Y., Kagawa H., Young G. 1982. Cellular sources of sex steroids in teleost gonads // Canadian J. of Fisheries and Aquatic Science. V. 39. P. 56–64.

166. Nagahama Y. 1987 a. Endocrine control of oocyte maturation // Hormones and reproduction in fishes, amphibians, and reptiles. / Eds. Norris D.O., Jones R.E. New York: Plenum Press. P. 171–202.

167. Nagahama Y. 1987 b. 17a,20b-Dihydroxy-4-pregnen-3-one: a teleost maturation induciong hormone // Develop Growth Differ. V. 29. № 1. P. 1–12.

168. Nagahama Y. 1989. Regulation of gametogenesis in teleosts // Zoological Science. (Jap.). V. 5. P. 1071.

169. Nagahama Y. 1990. Endocrine control of oocyte maturation in teleosts / Progress in comparative endocrinology. Wiley; Liss. P. 385–392.

170. Nakamura M., Nagahama Y. 1985. Steroid producing cells during ovarian differentiation of tilapia, Sarotherodon niloticus // Dev. Growth Differ. V. 25. № 6. P. 701–708.

171. Nakamura M., Nagahama Y. 1989. Differentiation and development of Leydig cells, and change of testosterone levels during testicular differentiation in tilapia Oreochromis niloticus // Fish Physiology and Biochemistry. V. 7. P. 211–251.

172. Nakamura M., Nagahama Y. 1993. Ultrastructural study on the differentiation and development of steroid-producing cells during ovarian differentiation in the amago salmon Oncorhynchus rhodurus // Aquaculture. V. 112. P. 237–251.

173. Nakamura M., Speker J., Nagahama Y. 1996. Innervation of steroid-producing cells in the ovary of tilapia Oreochromis niloticus // Zoological Science. V. 13. P. 603–608.

174. Nakamura M., Kobayashi T., Chang X.-T., Nagahama Y. 1998. Gonadal sex differentiation in teleost fish // J. of Experimental Biology. V. 281. P. 362–372.

175. Nakamura I., Evans J.C., Kusakabe M., Nagahama Y., Young G. 2005. Changes in steroidogenic enzyme and steroidogenic acute regulatory protein messenger RNAs in ovarian follicles during ovarian development of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) // General and Comparative Endocrinology. V. 144 (3). P. 224–231.

176. Nicholls T. J., Maple G. 1972. Ultrastructural observations on possible sites of steroid biosynthesis in the ovarian follicular epithelium of two spesies of Cichlid fish, Cichlasoma nigrofasciatum and Haplochromis multicolor // Zeitschrift für Zellforschung und Mikroskopische Anatomie. V. 128. P. 317–335.

177. Nuner S., Trant J.M. 1999. Regulation of interrenal gland steroidogenesis in the Atlantic stingray (Dasyatis sabina) // J. of Experimental Biology. V. 284. № 5. P. 517–525.

178. O’Halloran M.J., Idler D.R. 1970. Identification and distribution of the leydig cell homolog in the testis of sexually mature Atlantic salmon Salmo salar // General and Comparative Endocrinology. V. 15. P. 361–364.

179. Oota I., Yamamoto K. 1966. Interstitial cells in the immature testes of the rainbow trout // Annot. Zool. Jpn. V. 39. P. 142–148.

180. Patsoula E., Loutradis D., Drakakis P., Michalas L., Bletsa R., Michalas S. 2003. Messenger RNA expression for the follicle-stimulating hormone receptor and luteinizing hormone receptor in human oocytes and preimplantationstage embryos // Fertility and Sterility. V. 79. № 5. P. 1187–1193.

181. Pavlidis M., Dimitron D., Dessypris A. 1994. Testosterone and 17b-estradiol plasma fluctuations throughout spawning period in male and female rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum), kept under several photoperiod regimes // Annales Zoologici. V. 31. № 3. P. 319–327.

182. Perez F., Fuenzalida A., Mendez E., Cerisola H. 1983. Myoid and Leydig-type interstitial cells are simultaneously innervated in the testes of the clingfish Sicyases sanguines (Teleostei) // Archivos de Biologia y Medicina Experimentales. V. 16. P. 177.

183. Pickford G.E., Atz J.W. 1957. The physiology of the pituitary gland of the fishes // Zool. Soc. New-York. 310 p.

184. Pierantoni R., Cobellis G., Meccariello R., Fasano S. 2002. Evolutionary aspects of cellular communication in the vertebrate hypothalamo-hypophysio-gonadal axis // International Review of Cytology. V. 218. P. 69–141.

185. Piferrer F., Zanuy S., Carrukko M., Solar I. I., Devlin R. H., Donaldson E.M. 1994. Brief treatment with an aromatase inhibitor during sex differentiation causes chromosomally female salmon to develop as normal, functional males // J. of Experimental Biology. V. 270. P. 255–262.

186. Polenov A.L., Garlov P.E. 1974. The hypothalamo-hypophysial system in Acipenseridae. IV. The runctional morfology of the neurohypophysis of Acipenser gueldenstaedti Brandt and Acipenser stellatus Pallas after exposure to different salinities // Z. Zellforsch. V. 148. № 2. P. 259–275.

187. Pongthana N., Penman D. J., Baoprasertkul P., Hussain M.G., Islam M.S., Powell S.F., McAndrew B.J. 1999. Monosex female production in the silver barb (Puntius gonionotus Bleeker) // Aquaculture. V. 173. № 1–4. P. 247–256.

188. Pottinger T.G. 1988. Seasonal variation in in specific plasmaand target-tissue binding of androgens, relative to plasma steroid levels, in the brown trout, Salmo trutta L. // General and Comparative Endocrinology. V. 70. P. 334–344.

189. Pottinger T.G., Balm P.H.M., Pickering A.D. 1995. Sexual maturity modifies the responsiveness of the pituitary-interrenal axis to stress in male rainbow trout // General and Comparative Endocrinology. V. 98. P. 311–320.

190. Queralt S. M., Avvakumov G. V., Blazquez M., Piferrer F., Hammond G. L. 2003. Sea Bass (Dicentrarchus labrax L.) sex hormone-binding globulin (SHBG): cloning, characterization and sites of expression // Abstr. 7th Intern. Symp. on Reproductive Physiology of Fish. Mie. Japan. P. 61.

191. Reinboth B. 1962. The effects of testosterone on female Coris julis a wrasse with spontaneous sex-inversion // General and Comparative Endocrinology. V. 2. P. 39.

192. Reinboth B. 1969. Varying effects with different ways of hormone administration of gonad differentiation in teleost fish // General and Comparative Endocrinology. V. 13. P. 527–528.

193. Reinboth R., Becker B., Latz M. 1986. In vitro studies on steroid metabolism by gonadal tissues from ambisexual teleosts: II. Conversion of androstenedione by the heterologous gonadal tissues of the protandric sea bream Pagellus acarne (Risso) // General and Comparative Endocrinology. V. 62. P. 335–340.

194. Rosenstrauch A., Weil S., Degen A.A., Friedlander M. 1998. Leidig cell functional structure and plama androgen level during the decline in fertility in aging roaster // General and Comparative Endocrinology. V. 109. № 2. P. 251–258.

195. Rothbard S., Moav B., Yaron Z. 1987. Changes in steroid concentrations during sexual ontogenesis in tilapia // Aquaculture. V. 61. P. 59–74.

196. Sangalang G. B., Freeman H. C. 1974. Effects of sublethal сadmium on maturation and testosterone and 11-ketotestosterone production in vivo in brook trout // Biol. Reprod. V. 11. P. 429–435.

197. Sangalang G.B., Freeman H.C. 1988. In vitro biosynthesis of 17a-20b-dihydroxy-4-pregnen-3-one by the ovaries, testes, and head kidneys of the Atlantic salmon Salmo salar // General and Comparative Endocrinology. V. 69. P. 230–234.

198. Satoh N. 1974. An ultrastructural study of sex differentiation in the teleost Oryzias latipes // J. of Embryology and Experimental Morphology. V. 32. P. 195–215.

199. Schreck C.B., Hopwood M.L. 1974. Seasonal androgens and estrogens patterns in the goldfish, Carassius auratus // Transactions of the American Fisheries Society. V. 2. P. 375–378.

200. Schulz R. W., Vanderwind F., Janssendommerholt C., Peute J., Mylonas C. C., Zohar Y., Swanson P., Goos H. J.T. 1997. Modulation of testicular androgen production in adolescent african catfish (Clarias gariepinus) // General and Comparative Endocrinology. V. 108. № 1. P. 56–66.

201. Scott A. P., Bye V. J., Baynes S.M. 1980. Seasonal variations in sex steroids of female rainbow trout Salmo gairdneri Richardson // J. of Fish Biology. V. 17. P. 587–592.

202. Scott A.P., Sumpter J.P., Hardiman P.A. 1983. Hormone changes during ovulation in the rainbow trout (Salmo gairdneri R.) // General and Comparative Endocrinology. V. 49. P. 128–134.

203. Senthilkumaran B., Yoshiura Y., Oba Y., Sudhakuman C. C., Wang D.S., Kobayashi T., Nagahama Y. 2003. Steroiogenic shift is a critical event for ovarian follicles to undergo final maturation // Abstr. 7th Intern. Symp. on Reproductive Physiology of Fish. Mie. Japan. P. 79.

204. Shappell N.W., Hyndman K.M., Bartell S.E., Schoenfuss H.L. 2010. Comparative biological effects of potency of 17α- and 17β-estradiol in fathead minnows // Aquatic toxicology. V. 100. № 1. P. 1–8.

205. Shedpure M., Pati A.K. 1996. Do thyroid and testis modulate the effects of pineal and melatonin on haemopoetic variables in Clarias batrachus // J. of Biosciences. V. 21. № 6. P. 797–808.

206. Sower S.A., Schreck C.B. 1982. Steroid and thyroid hormones during sexual maturation of coho salmon (Oncorhynchus kisutch) in sea water or fresh water // General and Comparative Endocrinology. V. 47. P. 42–53.

207. Srivastava S. 1999. Ultrastructural evidence for the presence of secretory cells in the pineal parenchyma of Heteropneustes fossilis // J. of Biosciences. V. 24. № 2. P. 193–198.

208. Stacey N.E. 2003. Hormones, pheromones, and reproductive behavior // Abstr. 7th Intern. Symp. on Reproductive Physiology of Fish. Mie. Japan. P. 65.

209. Stanley H., Chieffi G., Botte V. 1965. Histological and histochemical observations on the testis of Gobius paganellus // Zeitschrift für Zellforschung und Mikroskopische Anatomie. V. 65. P. 350–362.

210. Stuart-Kregor P.A.C., Sumpter J. P., Dodd J. M. 1981. The involvement of gonadotropin and sex steroids in the control of reproduction in the parr and adults of Atlantic salmon, Salmo salar L. // J. of Fish Biology. V. 18. P. 59–72.

211. Sugimoto Y., Takahashi H. 1979. Ultrastructural changes of testicular interstitial cells of silver Japanese eels Anguilla japonica, treated with human chorionic gonadotropin // Bulletin of Faculty Fisheries, Hokkaido University. V. 30. P. 23–33.

212. Sun B., Pankhurst N.W. 2003. Correlation between oocyte development and plasma levels of steroids and vitellogenin in greenback flounder Rhombosolea tapirine // Abstr. 7th Intern. Symp. on Reproductive Physiology of Fish. Mie. Japan. P. 95.

213. Sun P., You F., Liu M., Wu Z., Wen A., Li J., Xu Y., Zhang P. 2010. Steroid sex hormone dynamics during estradiol-17β induced gonadal differentiation in Paralichthys olivaceus (Teleostei) // Chinese J. of Oceanology and Limnology. V. 28. № 2. P. 254–259.

214. Sunobe T., Nakamura M., Kobayashi Y., Kobayashi T., Nagahama Y. 2005. Aromatase immunoreactivity and the role of enzymes in steroid pathways for inducing sex change in the hermaphrodite gobiid fish Trimma okinawae // Comparative Biochemistry and Physiology. Part A: Molecular & Integrative Physiology. V. 141 (1). P. 54–59.

215. Takahashi H., Iwasaki Y. 1973. The occurrence of histochemical activity of 3b-hydroxysteroid dehydrogenase in the developing testes of Poecilia reticulata // Development Growth & Differentiation. V. 15. P. 241–253.

216. Tokarz J, Möller G, Hrabě de Angelis M, Adamski J. 2015. Steroids in teleost fishes: A functional point of view // Steroids. V. 103. P. 123–44. DOI: 10.1016/j.steroids.2015.06.011. 0039–128X.

217. Tuan P. A., Mair G. C., Little D. C., Beardmore J. A. 1999. Sex determination and the feasibility of genetically male tilapia production in the Thai-Chitralada strain of Oreochromis niloticus (L) // Aquaculture. V. 173. № 1–4. P. 257–269.

218. Tzchori I., Degani G., Elisha R., Eliyahu R., Hurvitz A., Vaya J., Moav B. 2004. The influence of phytoestrogens and oestradiol-17β on growth and sex determination in the European eel (Anguilla аnguilla) // Aquaculture Research. V. 35. № 13. C. 1213–1219.

219. Upadhyay S.N., Breton B., Billard R. 1978. Ultrastructure studies on experimentally induced vitellogenesis in juvenile rainbow trout Salmo gairdneri // Ann. Biol. Anim., Biochim., Biophys. V. 18. P. 1019–1026.

220. Van Bohemen C.G., Lambert J.G.D. 1979. Steroidogenesis in the ovary of the rainbow trout, Salmo gairdneri // J. of Endocrinology. V. 80. P. 37–38.

221. Van den Hurk R. 1973. The localization of steroidogenesis in the testes of oviparous and viviparous teleosts // Proc. K. Ned. Akad. Wet., Ser. C. V. 76. P. 270–279.

222. Van den Hurk R. 1974. Steridogenesis in the testis and gonadotropic activity in the pituitary during postnatal development of the black molly Mollienisia latipinna // Proc. K. Ned. Akad. Wet., Ser. C. V. 77. P. 193–200.

223. Van den Hurk R., Meek J., Peute J. 1974. Ultrastructural study of the testis of the black molly Mollienisia latipinna. II. Sertoli cells and leydig cells // Proc. K. Ned. Akad. Wet., Ser.C. V. 77. P. 470–476.

224. Van den Hurk R., Lambert J.G.D., Peute J. 1982. Steroidogenesis in the gonads of rainbow trout fry (Salmo gairdneri) before and after the onset of gonadal sex differentiation // Reprod. Nutr. Develop. V. 22. № 2. P. 413–425.

225. Van den Hurk R., Vermeij J.A.J., Stegenga J., Peute J., Oordt P.G.W.J. 1978. Cyclic changes in the testis and vas deferens of the rainbow trout Salmo gairdneri with special reference to sites of steroidogenesis // Ann. Biol. Anim., Biochim, Biophys. V. 18. P. 899–904.

226. Van den Hurk R., Peute J. 1979. Cyclic changes in the ovary of the rainbow trout, Salmo gairdneri, with special reference to sites of steroidogenesis // Cell and Tissue Research. V. 199. P. 289–306.

227. Vinas J., Asensio E., Canavate J.P., Piferrer F. 2013. Gonadal sex differentiation in the Senegalese sole (Solea senegalensis) and first data on the experimental manipulation of its sex ratios // Aquaculture. V. 384–387. P. 74–81.

228. Wallace R. A. 1985. Vitellogenesis and oocyte growth in nonmammalian vertebrates // Developmental Biology. V. 1. P. 127–177.

229. Webb M.A.H., Doroshov S.I. 2011. Importance of environmental endocrinology in fisheries management and aquaculture of sturgeons. Gen. Comp. Endocrinol., 170(2): 313–321. DOI: 10.1016/j.ygcen.2010.11.024

230. Wiegand M. D., Peter R. E. 1980. Effects of testosterone, oestradiol-17b and fasting on plasma free fatty acids in the goldfish, Carassius auratus // Comparative Biochemistry and Physiology. Part A.V. 66. P. 323–326.

231. Wingfield J.C., Grimm A.S. 1977. Seasonal changes in plasma cortisol, testosterone and oestradiol-17b in the plaice, Pleuronectes platessa L. // General and Comparative Endocrinology. V.31. P. 1–11.

232. Whitehead C., Bromage N.R., Foster J.R. 1978. Seasonal changes in reproductive function of the rainbow trout Salmo gairdneri // J. of Fish Biology. V. 5. P. 227–230.

233. Wingfield J.C. 1980. Sex steroid-binding proteins in vertebrate blood // Hormones, adaptation and evolution. / Eds. Ishii S., Hirano T., Wada M. Tokyo: Jap. Sci. Press; Berlin: Springer Verlag. P. 135–144.

234. Yamamoto T. 1962. Hormonic factors affecting gonadal sex differentiation in fish // General and Comparative Endocrinology. Suppl. 1. Р. 341–345.

235. Yamamoto T., Onozato H. 1968. Steroid producing cells in the ovary of the zebrafish, Brachydanio rerio // Annot. Zool. Jpn. V. 41. P. 119–128.

236. Yamamoto T. 1969. Sex differentiation // Fish Physiology. V. 3. P. 117–158.

237. Yang Q., Yang X., Liu J., Ren W. et al. 2017. Exposure to bisphenol B disrupts steroid hormone homeostasis and gene expresion in the hypothalamic-pituitary-gonads axis of zebrafish // Water, Air, and Soil Pollution. V. 228, № 3. P. 112/1–112/12.

238. Yaron Z., Terkatin-Shimony A., Shaham Y., Salser H. 1977. Occurrence and biological activity of estradiol-17b in the intact and ovariectomized Tilapia aurea (Cichlidae teleostei) // General and Comparative Endocrinology. V. 33. P. 45–52.

239. Young G., Kagawa H., Nagahama Y. 1984. Role of ovarian thecal and granulosa cells in the production of maturationinducing steroid by ovarian follicles of salmonid fishes // General and Comparative Endocrinology. V. 53. P. 455.

240. Young G. 1993. Effects of hypophysectomy on coho salmon interrenal: maitenance of steroidogenic pathway and restoration of in vitro responsiveness to adrenocorticotropin after handling // General and Comparative Endocrinology. V. 92. P. 428–438.

241. Youngson A. F., Webb J.H. 1993. Thyroid hormone levels in Atlantic salmon (Salmo salar) during the return migration from the ocean to spawn // J. of Fish Biology. V. 42. № 2. P. 293–300.

242. Zelennikov O.V., Mosyagina M.V., Fedorov K.E. 1999. Oogenesis inhibition, plasma steroid levels, and morphometric changes in the hypophysis in Russian sturgeon (Acipenser gueldenstaedti Brandt) exposed to low environment pH // Aquatic Toxicology. V. 46. P. 33–42.


Рецензия

Для цитирования:


Зеленников О.В., Мосягина М.В. Половые стероидные гормоны и стероидсекреторные клетки в гонадах у круглоротых и рыб. Труды ВНИРО. 2023;193:56-81. https://doi.org/10.36038/2307-3497-2023-193-56-81

For citation:


Zelennikov О.V., Mosyagina M.V. Sex steroid hormones and steroid secretory cells in the gonads of cyclostomes and fish. Trudy VNIRO. 2023;193:56-81. (In Russ.) https://doi.org/10.36038/2307-3497-2023-193-56-81



Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2307-3497 (Print)

По вопросу подписки и приобретения номеров журналов просьба обращаться в ООО «Агентство «КНИГА-СЕРВИС» (т.:  495 – 680-90-88;  E-mail: public@akc.ru  Web: www.akc.ru).