К разработке техники термического маркирования отолитов личинок камбалы-калкана

Целью работы являлась оценка применимости метода термического маркирования отолитов для личинок и ранней молоди камбалы-калкана, полученных в индустриальных условиях для пополнения природных популяций.

Используемые методы: для мечения в экспериментальных условиях трёх групп личинок разного возраста использовали минимум три последовательных цикла резкого снижения температуры воды в диапазоне 3,7–7,0 °C, с последующим выравниванием температуры до благоприятных для личинок значений. Для оценки эффективности проведённого маркирования проводили фиксацию личинок, затем извлекали отолиты (сагитты и лапиллюсы), шлифовали вручную на шлифовальных дисках Buehler и просматривали на тринокулярном микроскопе Leica DMLS для обнаружения последовательного ряда колец метки.

Новизна: термическое маркирование отолитов личинок камбалообразных рыб было проведено впервые.

Результат: показана возможность термического маркирования отолитов личинок и ранней молоди камбалы-калкана. Установлено, что наиболее чёткие метки на отолитах можно получить при мечении на завершающих стадиях метаморфоза (в возрасте 45–47 сут.), после перехода личинок к донному образу жизни. Оптимальный температурный градиент составляет 5–6 °C при продолжительности воздействия низкой температуры в течение 5 часов и проведении не менее трёх последовательных циклов маркирования.

Практическая значимость: результаты исследования могут быть использованы для массового маркирования молоди камбалы-калкана в целях определения вклада искусственного воспроизводства в пополнение природных популяций, а также при разработке методов маркирования рыб — объектов искусственного воспроизводства различной систематической принадлежности.

1. Акиничева Е. Г. 2006. Особенности сухого маркирования тихоокеанских лососей // Современные проблемы лососевых рыбоводных заводов Дальнего Востока. Мат. межд. науч.-практ. семинара. Петропавловск-Камчатский: Камчатский печатный двор. С. 224–234.

2. Куманцов М. И. 2013. Черноморская камбала-калкан: состояние запасов и пути их сохранения и восстановления // Труды ВНИРО. Т. 150. С. 21–34.

3. Маслова О. Н. 2013. Разведение и товарное выращивание черноморской камбалы-калкана Scophthalmus maeoticus: проблемы и методы // Труды ВНИРО. T. 150. C. 35–49.

4. Попова В. П., Кокоз Л. М. 1973.О динамике стада черноморской камбалы-калкана и его рациональной эксплуатации // Труды ВНИРО. Т. 91. С. 151–160.

5. Фурсенко Е. Б. 2021. Опыт термического мечения отолитов личинок щуки обыкновенной // Труды ВНИРО. Т. 183. С. 75–86. DOI:10.36038/2307–3497–2021–183–75–86

6. Ханайченко А. Н., Гирагосов В. Е. 2021. Черноморский калкан и его ближайший родственник, тюрбо. Севастополь: ФИЦ ИнБЮМ. 252 с. DOI:10.21072/978–5–6044865–6–6

7. Bashey F. A. 2004. Comparison of the Suitability of Alizarin Red S and Calcein for Inducing a Non lethally Detectable Mark in Juvenile Guppies // Transactions of the American Fisheries Society. V. 133. Is. 6. P. 1516–1523. DOI:10.1577/T03–073.1

8. Bergstad O. A. Folkvord А. 1997. Dispersal of tagged juvenile turbot Scophthalmus maximus on the Norwegian Skagerrak coast // Fisheries Research. V. 29. Is. 3. P. 211–215. https://doi.org/10.1016/S0165–7836(96)00543–7

9. Campana S. E. 1983. Factors affecting the production of daily growth increments in the otoliths of fishes. The University of British Columbia. 151 p.

10. Campana S. E., Neilson J. D. 1985. Microstructure of fish otoliths // Can. J. of Fisheries and Aquatic Sciences. № 42. Р. 1014– 1032. DOI:10.1139/f85–127

11. Campanella D., Gаrriz А., Colautti D. C., Somoza G. M., Miranda L. A. 2013. Osmotic induction marking with Alizarin Red S on juveniles of pejerrey, Odontesthes bonariensis (Atherinopsidae) // Neotropical Ichthyology. V. 11(1). P. 95–100. DOI:10.1590/S1679–62252013000100011

12. Eckmann R., Rey P. 1987. Daily increments on the otoliths of larval and juvenile Coregonus spp., and their modification by environmental factors // Hydrobiologia. V. 148. P. 137– 143. DOI:10.1007/BF00008399

13. Edeyer A., De Pontual H., Payan P., Troadec H., Severe A., Mayer-Gostan N. 2000. Daily variations of the saccular endolymph and plasma compositions in the turbot Psetta maxima: relationship with the diurnal rhythm in otolith formation // Mar. Ecol. Prog. Ser. № 192. Р. 287–294. DOI:10.3354/meps192287

14. Iglesias J., Rodriguez-Ojea G. 1997. The use of alizarin complexone for immersion marking of the otoliths of embryos and larvae of the turbot, Scophthalmus maximus (L.): Dosage and treatment time // Fisheries Management and Ecology. V. 4 (5). Р. 405–417. DOI:10.1046/j.1365–2400.1997.00052

15. Isshiki T., Katayama S. 2007. Otolith staining by oral administration of alizarin complexone with enteric-coated microcapsules for juvenile Japanese flounder (Paralichthys olivaceus) // Bull. Kanagawa Prefect. Fish. Tech. Cent. I. 2. P. 43–49

16. Liu Q., Zhang X. M., Zhang P. D., Sylvanus N. 2009. The use of alizarin red S and alizarin complexone for immersion marking Japanese flounder Paralichthys olivaceus (T.) // Fisheries Research. V. 98 (1). P. 67–74. DOI:10.1016/j.fishres.2009.03.014

17. Oesau S., Thaller G., Schulz C., Tetens J. 2013. Application of PIT tags for individual identification of turbot (Scophthalmus maximus) // Archiv Tierzucht. V. 56. 28. P. 285–292. DOI:10.7482/0003–9438–56–028

18. Victor B. C. 1982. Daily otolith increments and recruitment in two coral-reef wrasses, Thalassoma bifasciatum and Halichoeres bivittatus // Mar. Biol. V. 71. P. 203–208. DOI:10.1007/BF00394631

19. Walker S. P.W., McCormick M.I. 2004. Otolith-check formation and accelerated growth associated with sex change in an annual protogynous tropical fish // Mar. Ecol. Prog. Se. Vol. 266. P. 201–212. DOI:10.3354/meps266201

20. Wang N., Eckmann R. 1992. Effects of photoperiod, feeding regime and water temperature on the formation of daily growth increments in otoliths of larval pike (Esox lucius L.) // J. Appl. ichthyol. V. 8. P. 246–250. DOI:10.1111/j.1439–0426.1992.tb00690.x

21. Yang K., Zeng R., Gan W., Deng L., Song Z. 2016. Otolith fluorescent and thermal marking of elongate loach (Leptobotia elongata) at early life stages // Environ. Biol. Fish. V. 99. P. 687. DOI:10.1007/s10641–016–0509–6