Thermal marking of otoliths in common pike larvae
https://doi.org/10.36038/2307-3497-2021-183-75-86
Abstract
The article provides a detailed review of the marking methods of juvenile fish and discusses the mechanisms of the microstructure pike otoliths’ formation. The feasibility of thermal otolith marking of larvae and early juvenile fish with a short period of embryonic development is shown on the example of the common pike. The objectives of the study were to determine the most suitable age of pike juveniles for marking, and the optimal duration of temperature exposure. Three marking protocols were tested, in which the water temperature gradient was 7-12 °C, and the exposure time was 5, 6 and 10 hours, respectively. The pike larvae were marked at the age of 4 days and 11 days (after the start of the exogenous feeding) at least four times. The results of marking were evaluated on the first day and on the 10th day after marking, as well as at later stages of development (in the age of 21-44 days). Most visible marks were noted in short heating cycles (5-6 hours) in larvae before the start of the exogenous feeding.
About the Author
E. B. Fursenko
Russian Federal Research Institute of Fisheries and Oceanography («VNIRO»)
Russian Federation
Russian Federation
References
1. Акиничева Е.Г. 2006. Особенности сухого маркирования тихоокеанских лососей // Современные проблемы лососевых рыбоводных заводов Дальнего Востока. Мат. межд. науч.-практ. семинара. С. 224-234.
2. Акиничева Е.Г, Рогатных А.Ю. 1996. Опыт мечения лососей на рыбоводных заводах посредством термического маркирования // Вопросы ихтиологии. Т. 36. № 5. С. 693-698.
3. Голованов В.К. 2012. Эколого-физиологические закономерности распределения и поведения пресноводных рыб в термоградиентных условиях. Дисс.. док. биол. наук. М.: МГУ. 250 с.
4. Городилов Ю.Н. 1985. Периодизация и хронология эмбрионально-личиночного развития некоторых видов пресноводных рыб // Сборник научных трудов ГосНИОРХ. Вып. 235. С. 31-49.
5. Ефимов А.Б., Бурлаченко И.В., Ежкин М.А., Береговский А.А., Николаева Н.А. 2011. Особенности индустриального выращивания европейской щуки Esox lucius в условиях установки замкнутого водообеспечения // Рыбное хозяйство. № 5. С. 80-83.
6. Журавлев В.Д. 2006. Рыбы бассейна Верхней Оби // Экология рыб Обь-Иртышского бассейна. Щука. М.: Т-во научных изданий КМК. C. 223-225.
7. Зубин А.А.,Жуков В.П., Ульянов А.Г. 2010. Предложения по повышению эффективности воспроизводства ценных видов водных биологических ресурсов в водоёмах Калининградской области // Рыба и морепродукты. № 3 (51). С. 49-53.
8. Ильмаст Н.В., Стерлигова О.П., Кучко Я.А. 2018. Экосистема Урозера и результаты вселения в водоём новых видов рыб // Российский Журнал Биологических Инвазий. № 3. С. 62-69.
9. Капшай Д.С., Голованов В.К. 2009. Верхние летальные температуры и термопреферендум молоди щуки (Esox lucius L.) // Рибне господарство. Вып. 66. С. 65-70.
10. Кистер А.А. 2017. О необходимости присутствия щуки (Esox lucius) в водоёмах на примере Красноярского водохранилища // Тенденции развития науки и образования. № 27-1. С. 12-14.
11. Костомарова А.А. 1959. Биологическое значение этапа смешанного питания для развития личинок щуки // Рыбное хозяйство. № 8. С. 25-27.
12. Ростовцев А.А., Егоров Е.В., Зайцев В.Ф. 2011. Методические рекомендации по зарыблению озёр выращиванию и вылову товарной рыбы в озёрах. Новосибирск: Госрыбцентр. Доступно через: https://textarchive.ru/c-1661274-pall.html 15.02.2021
13. Сайфуллин Р.Р. 2006. Ихтиоценозы водоёмов Среднего Поволжья. Доступно через: https://kpfu.ru/staff_files/ F638281984/Monografiya.pdf 15.02.2021.
14. Силивров С.П. 2008. Эколого-морфологическая изменчивость щуки (Esox lucius L.) и её хозяйственное значение в разнотипных водоёмах Урала. Автореф. Дисс.. канд. биол. наук. Пермь: ПермГУ. 25 с.
15. Хайновский К.Б., Ульянов А.Г. 2015. Искусственное воспроизводство водных биологических ресурсов в Калининградской области: опыт, проблемы, перспективы // Труды ВНИРО. Т. 153. С. 57-73.
16. Хованская Л.Л., Сафроненков Б.П., Фомин Е.А. 2014. Руководство по искусственному разведению тихоокеанских лососей на рыбоводных заводах Магаданской области. Магадан: Кордис. 147 с.
17. Arnold D.E. 1966. Marking Fish with Dyes and Other Chemicals // U. S. Bureau of Sport Fisheries and Wildlife. Р. 44.
18. Fey D.P, Lejk A.M., Greszkiewicz M. 2018. Daily deposition of growth increments in sagittae and lapilli of laboratoryreared larval northern pike (Esox lucius) // Fishery Bulletin. V. 116. P. 302-309.
19. Hwang S.-D., Song M.-H., Lee T.-W., McFarlane G.A., King J.R. 2006. Growth of larval Pacific anchovy Engraulis japonicus in the Yellow Sea indicated by otolith microstructure analysis // J. of Fish Biology. V. 69. P 1756-1769.
20. Negus M.T. 1999. Thermal Marking of Otoliths in Lake Trout Sac Fry // North American J. of Fisheries Management. V.19. I. 1. P 127-140.
21. Panella G. 1971. Fish Otoliths: Daily Growth Layers and Periodical Patterns // Science. V. 173. №. 4002. P. 11241127.
22. Salem M.A., Omura Y. 1998. Embryonic Development of the Inner Ear and Otolith of the Rainbow Trout Oncorhynchus mykiss // Arch. Histol. Cytol. V. 61. № 2. P. 179-187.
23. Song Z., He C., Fu Z, Shen D. 2008. Otolith thermal marking in larval Chinese sucker, Myxocyprinus asiaticus // Environ Biol. Fish. V. 82. P. 1-7.
24. Tanaka K., Mugiya Y, Yamada J. 1981. Effects of photoperiod and feeding on daily growth patterns in otoliths of juvenile Tilapia nilotica // Fishery Bulletin. V. 79. № 3. P. 459-466.
25. Taubert B., Coble D. 1977. Daily Rings in Otoliths of Three Species of Lepomis and Tilapia mossambica // J. of the Fisheries Research Board of Canada. V. 34. P. 332-340.
26. Volk E.C., Schroder S.L., Grimm J.J. 1999. Otolith thermal marking // Fisheries Research. V. 43. Is. 1-3, October. P. 205-219.
27. Wang N., Eckman R. 1992. Effects of photoperiod, feeding regime and water temperature on the formation of daily growth increments in otoliths of larval pike (Esox lucius L.) // J. Appl. ichthyol. V. 8. I. 1-4, August. P. 246-250.
28. Wzigtek B., Hliwa P, Krol J., Stabinski R., Kozlowski J., Nagiec M., Gomulka P. 2007. Optimization of the method for thermal marking of coregonid fish otoliths // Advances in Limnology. V. 60. P. 369-376.
29. Yang K.j Zeng R., Gan W, Deng L., Song Z. 2016. Otolith fluorescent and thermal marking of elongate loach (Leptobotia elongata) at early life stages // Environ. Biol. Fish. V. 99. P. 687-695.
Review
For citations:
Fursenko E.B. Thermal marking of otoliths in common pike larvae. Trudy VNIRO. 2021;183:75-86. (In Russ.) https://doi.org/10.36038/2307-3497-2021-183-75-86
Email this article 