Опыт термического мечения отолитов личинок щуки обыкновенной
https://doi.org/10.36038/2307-3497-2021-183-75-86
Аннотация
В статье приведен подробный обзор литературных источников о способах мечения молоди рыб, рассмотрены некоторые вопросы формирования микроструктуры отолитов щуки. На примере щуки обыкновенной показана возможность термического мечения отолитов личинок и ранней молоди рыб с коротким периодом эмбрионального развития. В ходе исследования определили возраст личинок щуки, благоприятный для проведения мечения, и оптимальную продолжительность температурного воздействия. Были апробированы три схемы мечения со временем экспозиции 5, 6 и 10 часов при положительном температурном градиенте 7-12 °C. Температурному воздействию подвергали личинок в возрасте 4 суток и 11 суток (после перехода на внешнее питание) не менее четырёх раз. Результаты мечения оценивали в первые сутки после мечения, через 10 суток и на более поздних этапах развития (в возрасте 21-44 суток). Наилучший результат по качеству и сохранности меток на отолитах был получен при мечении личинок щуки до перехода на активное питание короткими циклами по 5-6 часов.
Об авторе
Елизавета Борисовна Фурсенко
Всероссийский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии (ФГБНУ «ВНИРО»)
Россия
Россия
Список литературы
1. Акиничева Е.Г. 2006. Особенности сухого маркирования тихоокеанских лососей // Современные проблемы лососевых рыбоводных заводов Дальнего Востока. Мат. межд. науч.-практ. семинара. С. 224-234.
2. Акиничева Е.Г, Рогатных А.Ю. 1996. Опыт мечения лососей на рыбоводных заводах посредством термического маркирования // Вопросы ихтиологии. Т. 36. № 5. С. 693-698.
3. Голованов В.К. 2012. Эколого-физиологические закономерности распределения и поведения пресноводных рыб в термоградиентных условиях. Дисс.. док. биол. наук. М.: МГУ. 250 с.
4. Городилов Ю.Н. 1985. Периодизация и хронология эмбрионально-личиночного развития некоторых видов пресноводных рыб // Сборник научных трудов ГосНИОРХ. Вып. 235. С. 31-49.
5. Ефимов А.Б., Бурлаченко И.В., Ежкин М.А., Береговский А.А., Николаева Н.А. 2011. Особенности индустриального выращивания европейской щуки Esox lucius в условиях установки замкнутого водообеспечения // Рыбное хозяйство. № 5. С. 80-83.
6. Журавлев В.Д. 2006. Рыбы бассейна Верхней Оби // Экология рыб Обь-Иртышского бассейна. Щука. М.: Т-во научных изданий КМК. C. 223-225.
7. Зубин А.А.,Жуков В.П., Ульянов А.Г. 2010. Предложения по повышению эффективности воспроизводства ценных видов водных биологических ресурсов в водоёмах Калининградской области // Рыба и морепродукты. № 3 (51). С. 49-53.
8. Ильмаст Н.В., Стерлигова О.П., Кучко Я.А. 2018. Экосистема Урозера и результаты вселения в водоём новых видов рыб // Российский Журнал Биологических Инвазий. № 3. С. 62-69.
9. Капшай Д.С., Голованов В.К. 2009. Верхние летальные температуры и термопреферендум молоди щуки (Esox lucius L.) // Рибне господарство. Вып. 66. С. 65-70.
10. Кистер А.А. 2017. О необходимости присутствия щуки (Esox lucius) в водоёмах на примере Красноярского водохранилища // Тенденции развития науки и образования. № 27-1. С. 12-14.
11. Костомарова А.А. 1959. Биологическое значение этапа смешанного питания для развития личинок щуки // Рыбное хозяйство. № 8. С. 25-27.
12. Ростовцев А.А., Егоров Е.В., Зайцев В.Ф. 2011. Методические рекомендации по зарыблению озёр выращиванию и вылову товарной рыбы в озёрах. Новосибирск: Госрыбцентр. Доступно через: https://textarchive.ru/c-1661274-pall.html 15.02.2021
13. Сайфуллин Р.Р. 2006. Ихтиоценозы водоёмов Среднего Поволжья. Доступно через: https://kpfu.ru/staff_files/ F638281984/Monografiya.pdf 15.02.2021.
14. Силивров С.П. 2008. Эколого-морфологическая изменчивость щуки (Esox lucius L.) и её хозяйственное значение в разнотипных водоёмах Урала. Автореф. Дисс.. канд. биол. наук. Пермь: ПермГУ. 25 с.
15. Хайновский К.Б., Ульянов А.Г. 2015. Искусственное воспроизводство водных биологических ресурсов в Калининградской области: опыт, проблемы, перспективы // Труды ВНИРО. Т. 153. С. 57-73.
16. Хованская Л.Л., Сафроненков Б.П., Фомин Е.А. 2014. Руководство по искусственному разведению тихоокеанских лососей на рыбоводных заводах Магаданской области. Магадан: Кордис. 147 с.
17. Arnold D.E. 1966. Marking Fish with Dyes and Other Chemicals // U. S. Bureau of Sport Fisheries and Wildlife. Р. 44.
18. Fey D.P, Lejk A.M., Greszkiewicz M. 2018. Daily deposition of growth increments in sagittae and lapilli of laboratoryreared larval northern pike (Esox lucius) // Fishery Bulletin. V. 116. P. 302-309.
19. Hwang S.-D., Song M.-H., Lee T.-W., McFarlane G.A., King J.R. 2006. Growth of larval Pacific anchovy Engraulis japonicus in the Yellow Sea indicated by otolith microstructure analysis // J. of Fish Biology. V. 69. P 1756-1769.
20. Negus M.T. 1999. Thermal Marking of Otoliths in Lake Trout Sac Fry // North American J. of Fisheries Management. V.19. I. 1. P 127-140.
21. Panella G. 1971. Fish Otoliths: Daily Growth Layers and Periodical Patterns // Science. V. 173. №. 4002. P. 11241127.
22. Salem M.A., Omura Y. 1998. Embryonic Development of the Inner Ear and Otolith of the Rainbow Trout Oncorhynchus mykiss // Arch. Histol. Cytol. V. 61. № 2. P. 179-187.
23. Song Z., He C., Fu Z, Shen D. 2008. Otolith thermal marking in larval Chinese sucker, Myxocyprinus asiaticus // Environ Biol. Fish. V. 82. P. 1-7.
24. Tanaka K., Mugiya Y, Yamada J. 1981. Effects of photoperiod and feeding on daily growth patterns in otoliths of juvenile Tilapia nilotica // Fishery Bulletin. V. 79. № 3. P. 459-466.
25. Taubert B., Coble D. 1977. Daily Rings in Otoliths of Three Species of Lepomis and Tilapia mossambica // J. of the Fisheries Research Board of Canada. V. 34. P. 332-340.
26. Volk E.C., Schroder S.L., Grimm J.J. 1999. Otolith thermal marking // Fisheries Research. V. 43. Is. 1-3, October. P. 205-219.
27. Wang N., Eckman R. 1992. Effects of photoperiod, feeding regime and water temperature on the formation of daily growth increments in otoliths of larval pike (Esox lucius L.) // J. Appl. ichthyol. V. 8. I. 1-4, August. P. 246-250.
28. Wzigtek B., Hliwa P, Krol J., Stabinski R., Kozlowski J., Nagiec M., Gomulka P. 2007. Optimization of the method for thermal marking of coregonid fish otoliths // Advances in Limnology. V. 60. P. 369-376.
29. Yang K.j Zeng R., Gan W, Deng L., Song Z. 2016. Otolith fluorescent and thermal marking of elongate loach (Leptobotia elongata) at early life stages // Environ. Biol. Fish. V. 99. P. 687-695.
Рецензия
Для цитирования:
Фурсенко Е.Б. Опыт термического мечения отолитов личинок щуки обыкновенной. Труды ВНИРО. 2021;183:75-86. https://doi.org/10.36038/2307-3497-2021-183-75-86
For citation:
Fursenko E.B. Thermal marking of otoliths in common pike larvae. Trudy VNIRO. 2021;183:75-86. (In Russ.) https://doi.org/10.36038/2307-3497-2021-183-75-86
Послать статью по эл. почте 