Картина крови и иммунный ответ в условиях транспортировки при высокой плотности у карпа обыкновенного

Цель работы: оценить влияние стресса при транспортировке с высокой плотностью посадки на физиологическое состояние и гематологические параметры годовиков карпа (Cyprinus carpio).

Материалы и методы: эксперимент проведён на двух группах рыб (средняя масса 77,4 ± 27,7 г), транспортируемых в герметичных пакетах в течение 24 ч. Контрольная группа перевозилась с плотностью 175 г/л без кондиционера, опытная — с плотностью 368 г/л с добавлением промышленного водного кондиционера (1,25 мл/л). Кровь для анализа отбирали из хвостовой вены трижды: за неделю до эксперимента, сразу после транспортировки и через 6 часов восстановления. Определяли лейкоцитарную формулу, эритрограмму, индекс СПК (суммарный показатель клеток) и морфометрию эритроцитов методом световой микроскопии окрашенных мазков.

Новизна: впервые показано, что применение специализированного водного кондиционера позволяет безопасно увеличить плотность посадки карпа при транспортировке более чем в 2 раза (до 368 г/л), минимизируя стресс-индуцированные изменения гематологических показателей по сравнению со стандартным режимом.

Результаты: транспортировка вызвала острый стрессовый отклик в обеих группах: увеличение доли нейтрофилов и снижение доли лимфоцитов. Однако в опытной группе с кондиционером эти изменения были достоверно менее выражены (снижение лимфоцитов до 81,0% против 70,0% в контроле). Через 6 часов после транспортировки гематологические показатели рыб опытной группы восстановились до исходного уровня быстрее и полнее, чем в контрольной группе.

Практическая значимость: полученные данные доказывают эффективность использования водных кондиционеров для увеличения плотности посадки карпа при транспортировке без ущерба для его физиологического состояния. Выявленные гематологические маркеры (соотношение нейтрофилы/лимфоциты, индекс СПК) могут использоваться для оперативной оценки уровня стресса у рыб, что позволит оптимизировать логистику в аквакультуре и снизить экономические потери.

1. Кандыбин А. А., Бубунец Э. В. 2025. Динамика кислородного режима при транспортировке карповых рыб в герметич­ных ёмкостях // Исследования молодых учёных в реали­зации приоритетов научно-технологического развития в области животноводства. Сб. тез. докл. молодеж. науч. конф. пос. Дубровицы. С. 111–112.

2. Микряков В. Р., Балабанова Л. В., Микряков Д. В. 2007. Влияние транспортировки на состав лейкоцитов периферической крови карпа Cyprinus carpio L. // Вопросы рыболовства. Т. 8. № 2(30). C. 209–214.

3. Никитенко А. И., Пронина Г. И., Орлов А. М., Артеменков Д. В., Строганов А. Н., Беляев В. А. 2022. О периферической крови у трёх видов рыб с разной экологией (Scombridae и Berycidae) // Известия РАН. Сер. биол. № 6. С. 661–667.

4. Орлов Ю. И., Кружалина Е. И., Аверина И.А, Ильичева Т. И. 1974. Транспортировка живой рыбы в герметических ёмкостях. М.: Пищевая промышленность. 97 с.

5. Пищенко Е. В., Морузи И. В. 2022. Мировые тенденции и пер­спективы выращивания карпа // Перспективы и возмож­ности отрасли. С. 164–177.

6. Пронина Г. И., Корягина Н. Ю. 2017. Методология физиолого-иммунологической оценки гидробионтов. СПб.: Лань. 96 с

7. Adah D. A., Adah A. S., Nwonuma C. O., Olaosebikan B., Oyekunle T. 2023. The Ameliorative effects of ascorbic acid on hematological and water quality parameters following a 100 km transportation of adult Clarias gariepinus // Media Kedokteran Hewan. V. 34. № . 1. P. 13–26. DOI: 10.20473/mkh.v34i1.2023.13‑26

8. Burgos-Aceves M.A., Lionetti L., Faggio C. 2019. Multidisciplinary haematology as prognostic device in environmental and xenobiotic stress-induced response in fish // Science of The Total Environment. V. 670. P. 1170–1183. DOI: 10.1016/j.scitotenv.2019.03.275.

9. Davis A. K., Maney D. L., Maerz J. C. 2008. The use of leukocyte profiles to measure stress in vertebrates: a review for ecologists // Functional Ecology. V. 22. № 5. P. 760–772. DOI: 10.1111/j.1365‑2435.2008.01467.x.

10. Dhabhar F. S. 2002. A hassle a day may keep the doctor away: stress and the augmentation of immune function // Integrative and Comparative Biology. V. 42. № 3. P. 556– 564. DOI: 10.1093/icb/42.3.556.

11. Dobšíková R., Svobodová Z., Bláhová J., Modrá H., Velíšek J. 2009. The effect of transport on biochemical and haematological indices of common carp (Cyprinus carpio L.) // Czech Journal of Animal Science. V. 54. № 11. P. 510– 518. DOI: 10.17221/52/2009‑CJAS

12. Eissa E. S.H., Okon E. M., Abdel-Warith A.W.A., Younis N. A., Gewaily M. S., Mahmoud S. F., El-Deriny M.M.E., Ahmed S. A., Mahmoud M. A., Dawood M. A.O. 2024. In-water Bacillus species probiotic improved water quality, growth, hemato-biochemical profile, immune regulatory genes and resistance of Nile tilapia to Aspergillus flavus infection // Aquaculture International. V. 32. P. 7087–7102. DOI: 10.1007/s10499‑024‑01503‑6.

13. Ellis T., North B., Scott A. P., Bromage N. R., Porter M., Gadd D. 2002. The effects of crowding and exercise on the immune response of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) // Fish & Shellfish Immunology. V. 12. № 3. P. 239–254. DOI: 10.1006/fsim.2001.0368

14. Gomes L. C., Araujo-Lima C.A.R.M., Roubach R., Chippari-Gomes A.R., Lopes N. P. 2003. Effect of Fish Density During Transportation on Stress and Mortality of Juvenile Tambaqui Colossoma macropomum // Journal of the World Aquaculture Society. V. 34. № 1. P. 76–84. DOI: 10.1111/j.1749‑7345.2003.tb00041.x.

15. Klak K., Maciuszek M., Pijanowski L., Marcinkowska M., Homa J., Verburg-van Kemenade B. M.L., Rakus K., Chadzinska M. 2024. Evolutionarily conserved mechanisms regulating stress-induced neutrophil redistribution in fish // Frontiers in Immunology. V. 15. P. 1330995. DOI: 10.3389/fimmu.2024.1330995

16. Luz R. K., Favero G. C. 2024. Use of Salt, Anesthetics, and Stocking Density in Transport of Live Fish: A Review // Fishes. V. 9. № 7. P. 286. DOI: 10.3390/fishes9070286.

17. Martemyanov V. I. 2013. Patterns of changes in sodium content in plasma and erythrocytes of freshwater fish at stress // Journal of Ichthyology. V. 53. № 3. P. 220–224. DOI: 10.1134/s0032945213020094.

18. Martinez-Porchas M., Martinez-Cordova L.R., Ramos-Enriquez R. 2009. Cortisol and glucose: Reliable indicators of fish stress? // Pan-American Journal of Aquatic Sciences. V. 4. № 2. P. 158–178.

19. Megarani D. V., Hardian A . B., Arifianto D., Santosa C. M., Salasia S. I.O. 2020. Comparative Morphology and Morphometry of Blood Cells in Zebrafish (Danio rerio), Common Carp (Cyprinus carpio carpio), and Tilapia (Oreochromis niloticus) // Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. V. 59. № 6. P. 673–680. DOI: 10.30802/AALAS‑JAALAS‑20‑000013.

20. Schreck C. B., Tort L. 2016. The concept of stress in fish // Fish Physiology / C. B. Schreck, L. Tort, A. P. Farrell, C. J. Brauner eds. V. 35. London: Academic Press. P. 1–34. DOI: 10.1016/B978‑0‑12‑802728‑8.00001‑1

21. Shu J. J., Heuer R. M., Hannan K. D., Stieglitz J. D., Benetti D. D., Rummer J. L., Grosell M., Brauner C. J. 2022. Enhanced oxygen unloading in two marine percomorph teleosts // Comparative Biochemistry and Physiology Pt A: Molecular & Integrative Physiology. V. 264. P. 111101. DOI: 10.1016/j.cbpa.2021.111101.

22. Thomas S., Perry S. F. 1992. Control and consequences of adrenergic activation of red blood cell Na+/H+ exchange on blood oxygen and carbon dioxide transport in fish // Journal of Experimental Zoology. V. 263. № 2. P. 160–175. DOI: 10.1002/jez.1402630206.

23. Wang L. G., Liu M. Q., Xie X. D., Sun Y. B., Zhang M. L., Zhao Y. et al. 2023. Effects of different water quality regulators on growth performance, immunologic function, and domestic water quality of GIFT tilapia // PLoS ONE. V. 18. № 8. P. e0290854. DOI: 10.1371/journal.pone.0290854.

24. Wendelaar Bonga S. E. 1997. The stress response in fish // Physiological Reviews. V. 77. № 3. P. 591–625. DOI: 10.1152/physrev.1997.77.3.591

25. Witeska M., Kondera E., Lugowska K., Bojarski B. 2022. Hematological methods in fish — Not only for beginners // Aquaculture. V. 547. P. 737498. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2021.737498.